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體外細胞培養(yǎng)測試藥物效應(yīng)的注意事項
點擊次數(shù):1741 更新時間:2015-12-31

    隨著醫(yī)學的發(fā)展,細胞培養(yǎng)技術(shù)在藥理學研究中得到廣泛應(yīng)用,特別是藥物對機體的藥效作用,有否毒性作用,必須通過體內(nèi)和體外實驗進行驗證。體內(nèi)實驗可采用動物實驗,體外實驗則可通過藥物對培養(yǎng)細胞的作用來判定。同時體外細胞培養(yǎng)技術(shù)也為深入探討藥物作用機制和有效藥物的篩選提供實驗平臺。

一、細胞選擇

    利用組織細胞做藥物檢測時,首先要考慮選擇什么細胞作為實驗對象,細胞選擇不當,會影響實驗結(jié)果的可信性和參考價值。在藥物效應(yīng)不明的情況下,對細胞的選擇可不必十分嚴格。如已知藥物有特殊效應(yīng)或欲求得對某一類細胞產(chǎn)生特定作用時,應(yīng)盡量選用相應(yīng)的細胞。進行藥物測試實驗時,對照細胞是實驗組合中不可少的組成部分,細胞種類的應(yīng)用原則也是符合性越大越好。

二、檢測藥物

    zui適宜的藥物劑量應(yīng)是:對正常細胞無影響或傷害zui小(能恢復),而殺傷效應(yīng)或特異性zui大的藥物劑量。用培養(yǎng)細胞作藥物測試,用經(jīng)驗測試法是比較實用的。即應(yīng)用在一定藥量范圍內(nèi)遞增藥量的測試辦法;確定一組藥量梯度數(shù)值,安排一組培養(yǎng)細胞,用多孔板培養(yǎng)細胞進行檢測,分別向各組培養(yǎng)細胞中加入不同的藥量。作用一段時間后,用臺盼藍染色法測試死活細胞比數(shù),取50%死亡細胞組作為粗ID(近似值)。為求得確切的ID,尚需做進一步的測試直至找到合適劑量為止,比較快和合理的辦法是觀察藥物對細胞形態(tài)和增殖生長的影響。

三、測試程序中的注意事項

(一)細胞

1.實驗細胞如藥效特點不明,可用HeLa、KB等通用癌細胞系。細胞引入后,選生長狀態(tài)良好的原瓶細胞。消化分離后接種人大瓶備用,待大瓶細胞增長至足夠數(shù)量后,取l~2瓶細胞用消化制成細胞懸液,分成等量接種入若干多孔板或15ml培養(yǎng)瓶中。用培養(yǎng)瓶測試時,一般每一劑量組至少接種21瓶;分7組,每組3瓶細胞。

2.對照細胞根據(jù)被測藥物性質(zhì)和要求應(yīng)選用與之相應(yīng)的二倍體細胞做對照;一切培養(yǎng)條件均應(yīng)與實驗組相一致。僅用一種癌細胞,分成加藥組和不加藥組.而不用相應(yīng)正常細胞作為對照組是不正確的。

(二)加藥

1.加藥時間給藥時間可采用接種前給藥和生長中給藥兩種方法。生長中給藥是常用的測試藥物方法。進行生長中加藥時,取ID 50/10為實驗劑量,加藥時間宜在接種細胞后約第48小時。

2.藥物作用持續(xù)時間 藥物在瓶皿中與細胞接觸時間不應(yīng)少于8h,一般可處理12~24h或更長。體內(nèi)用藥時,每批實驗過程中(一般為7d),讓藥物始終作用細胞。對照組做同樣處理,加等量的BSS或助溶劑。

(三)觀察

1.形態(tài)結(jié)構(gòu)細胞受藥物作用后,形態(tài)上很易發(fā)生改變,如成纖維細胞突起回縮、上皮細胞相互分離等.這些變化在一般光學顯微鏡下很易觀察到。但這些變化不一定十分可靠,形態(tài)變化應(yīng)主要以超微結(jié)構(gòu)的改變?yōu)橐罁?jù),觀察藥物對細胞膜、微絨毛、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)、線粒
體和染色質(zhì)等微細結(jié)構(gòu)有無影響。

2.生長和增殖培養(yǎng)中的細胞有時可能僅有生長而無增殖,特別是進行分化的細胞更是如此。因此不能單靠細胞數(shù)量作為判定細胞增殖*的標準。其他一些現(xiàn)象如肌細胞的增粗、神經(jīng)細胞突起的增長等均為細胞生長的表現(xiàn)。

3.細胞死亡凡能引起細胞內(nèi)相互制約系統(tǒng)中一個或多個環(huán)節(jié)的紊亂,zui終導致細胞機能障礙、進而緩解死亡的現(xiàn)象,都應(yīng)視為細胞死亡的范疇。如氰化物抑制細胞氧化磷酸化阻斷ATP供應(yīng)、干擾蛋白質(zhì)合成并抑制細胞修復等,這些作用都有一個發(fā)展過程,zui終能導致細胞死亡。因此確定細胞的死亡必須有一個時間范圍。

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