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實時熒光定量PCR試劑盒的常見問題及解決策略
點擊次數：1093 更新時間：2024-06-25
實時熒光定量PCR（Quantitative Real-Time PCR，簡稱qRT-PCR）技術，因其高靈敏度、高特異性和高定量準確性，已成為分子生物學研究中不可少的工具。然而，在實際使用過程中，實時熒光定量PCR試劑盒經常會遇到一些常見問題，影響了實驗結果的準確性和可靠性。本文將對這些問題進行梳理，并提出相應的解決策略。
一、常見問題
1.無CT值（信號）出現
無CT值出現是qRT-PCR實驗中最為常見的問題之一。可能的原因包括：反應循環(huán)數不足、檢測熒光信號的步驟有誤、引物或探針降解、引物或探針設計不合理、模板量不足或模板降解等。
2.CT值出現過晚
CT值出現過晚通常意味著PCR擴增效率較低。可能的原因包括：擴增效率低、PCR反應過程中退火及延伸的時間過短或過長、MgCl2濃度不合適、循環(huán)數設置不足、引物或探針設計有誤等。
3.標準曲線的線性關系不佳
標準曲線的線性關系不佳通常意味著PCR反應中存在不穩(wěn)定因素，影響了實驗結果的定量準確性。可能的原因包括：加樣存在誤差、標準品出現降解等。
二、解決策略
1.針對無CT值出現的解決策略
（1）確保反應循環(huán)數足夠。一般而言，循環(huán)數應設置在35至45個之間，避免背景信號過高影響結果。
（2）檢查熒光信號檢測步驟是否正確。根據試劑盒說明書或實驗方法，確保在正確的PCR反應步驟中采集熒光信號。
（3）通過PAGE電泳檢測引物和探針是否降解。若發(fā)現降解現象，應重新制備引物和探針。
（4）優(yōu)化引物和探針的設計。根據目的基因的特性，設計合適的引物和探針，避免引物跨越內含子或探針設計在擴增片段的5'端等可能導致擴增效率低的問題。
（5）確保模板量足夠且未降解。對于未知濃度的樣品，應從系列稀釋樣本的最高濃度做起，避免模板量不足導致無CT值出現。同時，注意樣品的儲存條件，避免反復凍融導致模板降解。
2.針對CT值出現過晚的解決策略
（1）優(yōu)化PCR反應條件。如適當降低退火溫度、調整延伸時間等，以提高PCR擴增效率。
（2）檢查MgCl2濃度是否合適。按0.5mM的間距調整MgCl2的濃度，找到適合本實驗條件的濃度。
（3）重新設計引物和探針。若引物或探針設計不合理，可能導致擴增效率低，應重新設計并優(yōu)化。
（4）確保PCR產物長度合適。PCR產物長度一般應在80至150bp之間，過長或過短都可能影響擴增效率。
3.針對標準曲線線性關系不佳的解決策略
（1）確保加樣準確。注意每次加樣的一致性及移液器的校正，避免加樣誤差導致標準曲線線性關系不佳。
（2）確保標準品質量穩(wěn)定。避免標準品反復凍融或長時間儲存導致降解，應重新制備并稀釋標準品。
實時熒光定量PCR試劑盒在使用過程中可能會遇到各種問題，但通過仔細排查原因并采取相應的解決策略，可以確保實驗結果的準確性和可靠性。
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